КАТЕГОРИИ:
АстрономияБиологияГеографияДругие языкиДругоеИнформатикаИсторияКультураЛитератураЛогикаМатематикаМедицинаМеханикаОбразованиеОхрана трудаПедагогикаПолитикаПравоПсихологияРиторикаСоциологияСпортСтроительствоТехнологияФизикаФилософияФинансыХимияЧерчениеЭкологияЭкономикаЭлектроника
|
Методические указания для самостоятельной работыСтр 1 из 3Следующая ⇒ Практическая работа № 21. Тема занятия:«Методы и питательные среды для культивирования анаэробов» Составила преподаватель Якимова Л.М.
Минск Практическая работа № 17 Тема занятия:«Методы и питательные среды для культивирования анаэробов» Цель занятия:познакомиться с основными методами и питательными средами для культивирования анаэробов.
Самостоятельная работа:
Методические указания для самостоятельной работы Исследование на анаэробы производят при:
Исследование на неклостридиальные анаэробы проводят при наличии хотя бы одного из следующих признаков: 1. Неприятный запах в очаге 2. Некротизация тканей и абсцедирование. 3. Локализация очага вблизи слизистой. 4. Развитие инфекции на фоне лечения аминогликозидами. 5. Черное окрашивание экссудата (привотелла,порфиромонас). 6. Септический тромбофлебит рядом с очагом Материал для исследования зависит от очага и формы инфекции. Жидкий материал (кровь, раневое отделяемое) забирают шприцем (игла должна быть заполнена материалом и втыкается в стерильную резиновую пробку). Посев надо делать у постели больного, при невозможности – хранить и транспортировать не позже 2 часов. Кусочки органов и тканей забирают тампоном. Тампоны должны быть очень тонкими (готовят из проволоки 2 мм толщиной как бакпетля). Вата должна быть детоксицирована путем кипячения в фосфатном буфере рН 7,4 15 мин для удаления оксикислот с последующим подсушиванием в сухожаровом шкафу и автоклавировании. Кусочки органов и тканей и детоксицированные металлические тампоны увлажняют консервирующей смесью(8 частей фосфатного буфера рН 7,2-7,4 +1 часть стерильного глицерина+1 часть лизированной крови, полученной путем 5-ти кратного замораживания и последующего оттаивания флакона со стерильной кровью). Для забора материала необходима система: стерильные 3-жды увлажненные в консервирующей смеси тампоны, стерильная пробирка, стерильная трубка-проводник (изготавливается из пастеровской пипетки длиной 4-5-6 см). Систему хранят в морозильной камере 1 неделю. За 10 мин. до забора материала систему извлекают из морозильной камеры для подогрева при комнатной температуре, вставляют в рану на глубину 2 см трубку-проводник с тампоном, а затем извлекают, трубку сбрасывают, а тампон помещают в стерильную пробирку. Лабораторная диагностика анаэробных инфекций требует: 1) анаэробных условий культивирования. 2) хороших питательных сред с добавками, гемином. 3) селективных сред. 4) параллельного посева и на аэробную флору. 5) микроскопирования нативного материала. Для культивирования анаэробов используют специальное оборудование: 1. Микроанаэростаты (МИ-752) – металлические банки или банки, изготовленные из прочного полиэтилена, с крышками, на которых укреплены монометр и 2 клапана: 1- для откачки воздуха, 2 – для подачи газа (N2, Н2, СО2, природного газа). Внутрь анаэростата помещают штативы для чашек. Можно внутрь микроанаэростата помещать газогенерирующие пакеты, представляющие собой пакет, внутри которого находятся соли лимонной кислоты или другие вещества, при добавлении к которым воды идет химическая реакция и выделяется газ. Для удаления следов О2 в микроанаэростат помещают палладиевый катализатор, поглощающий кислород (палладиевая стружка). Палладиевая стружка укладывается в полиэтеленовый пакет, который открывается перед помещением в микроанаэростат. После работы эффективность действия палладиевого катализатора снижается, в связи с чем возникает необходимость его регенерации, что достигается обработкой в сухожаровом шкафу при 160оС 1-1,5 часа (регенерировать палладиевую стружку можно до 60 раз). Завернутый перед прожариванием в бумагу палладий сохраняет способность поглощать О2 в течении 2 недель, а при герметизации упаковки 1-2 месяца. В микроанаэростат рекомендуется помещать индикатор анаэробиоза – бумажку, смоченную ризазурином (розовая окраска) или метиленовым синим (голубая окраска). Если после 1-2 часов пребывания в анаэростате индикаторная бумажка белеет, то кислорода в анаэростате нет. Если же при извлечении чашек бумажка остается окрашенной, это свидетельствует о наличии кислорода в чашках. 2.Система полиэтиленовых пакетов с зажимами. В пакет помещают газ-пак, катализатор, индикаторные бумажки и не более 2 чашек с культурами, герметично закрывают зажимом и помещают в термостат. При отсутствии палладия в газ-пак или микроанаэростат можно поместить смесь из 5 г пирогаллола и 10 г Na2CO3, поглощающих кислород. Вместо индикаторной бумажки можно пользоваться кусочками марли, пропитанными раствором из 4,2 мл 10% глюкозы, 0,1 мл 1н NaOH и 0,1 мл 1,5% водного раствора метиленовой сини или же смесью из 10 мл тиогликолевой среды и 3 капель 1 % водного раствора метиленовой сини. Импортные анаэростаты имеют ряд преимуществ по сравнению с отечественными. Прозрачные банки из оргстекла позволяют наблюдать рост микроорганизмов без нарушения герметичности внутренней среды. Наличие клапанов обеспечивает возможность замены вакуума газовой смесью (достигается это путем 3-кратного чередования откачки воздуха и запуска газовой смеси). При работе с таким анаэростатом перед открытием его нужно вначале выпустить газ вдали от источника огня (лучше в вытяжном шкафу).
|