КАТЕГОРИИ:
АстрономияБиологияГеографияДругие языкиДругоеИнформатикаИсторияКультураЛитератураЛогикаМатематикаМедицинаМеханикаОбразованиеОхрана трудаПедагогикаПолитикаПравоПсихологияРиторикаСоциологияСпортСтроительствоТехнологияФизикаФилософияФинансыХимияЧерчениеЭкологияЭкономикаЭлектроника
|
Комплекс фотосистемы II. Механизмы фотоокисления воды и выделения молекулярного кислородаКомплекс ФСII осуществляет окисление воды и восстановление пластохинонов, т.е. является Н2О-пластохиноноксидоредуктазой. Окислительно-восстановительные реакции в комплексе инициируются светом. В ходе первичных фотохимических реакций в РЦ ФСII образуется сильный окислитель П с уникально высоким редокс-потенциалом (E = +1,12 В), который способен вызвать цепь окислительно-восстановительных реакций, приводящих в итоге к окислению воды. Система окисления воды ФСII поставляет электроны в ЭТЦ хлоропластов, которые через ряд промежуточных переносчиков (пластохиноны, цитохром b6 f-комплекс и пластоцианин), попадают в ФС1 и используются на восстановление НАДФ+. Фотолиз воды, осуществляемый ФСII, сопровождается выделением молекулярного кислорода. Благодаря этому процессу фотосинтез растений является основным источником кислорода на Земле. Пептидный состав, редокс-центры, структурная организация ФСII.Комплекс ФСII высших растений и водорослей включает около 20 полипептидов, большая часть которых представлена интегральными белками, и только 5 полипептидов располагаются на поверхности мембраны, обращенной к люмену, формируя периферийный домен комплекса. Структурно и функционально в комплексе ФСII можно выделить ядро, ряд низкомолекулярных интегральных белков, примыкающих к ядру, функциональная роль которых остается до сих пор не вполне ясной, и белки водоокисляющего комплекса (ВОК). Структурно-функциональная организация комплекса ФСII представлена на рис. 3.34. Редокс-агенты, участвующие в транспорте электронов ФСII, располагаются в центральной части — ядре — комплекса ФСII и связаны с интегральными белками D1 и D2. Белки D1 (38 кДа) и D2 (39 кДа) имеют высокую степень гомологии друг с другом по первичной структуре и сходное расположение в мембране. Аминокислотные последовательности белков D1 и D2 также очень близки аминокислотным последовательностям L- и М-полипептидов реакционного центра пурпурных бактерий. Белки образуют по 5 трансмембранных α-спиралей, аминокислотные остатки которых и связывают компоненты реакционного центра ФСII, а также редокс-кофактры вторичного транспорта электронов. На белках D1 и D2 организован димер П680. Кроме того, каждый из белков присоединяет еще по 2 молекулы хлорофилла а (дополнительный и сопровождающий хлорофиллы), молекулу феофитина а (Фео), β-каротин и пластохинон (QA связан с белком D2, a QB — с белком D1). Между QA и QB находится ион двухвалентного железа, в координировании которого участвуют оба белка. Люменальный домен полипептида D1 присоединяет 4 иона марганца и формирует Мп-кластер, осуществляющий окисление воды. По данным рентгеноструктурного анализа, пигмент реакционного центра П680 располагается в области ФСII, обращенной к люменальному пространству тилакоида. На противоположной стороне комплекса, обращенной к строме, находятся хиноны QA и Qb и негеминовое железо. Почти симметрично оси, соединяющей П680 и негеминовое железо, на каждом из белков располагаются остальные тетра-пиррольные кофакторы: молекулы феофитина (на белке D1 — ФеоА, на белке D2 — Феов), сопровождающие хлорофиллы (ХлZ и ХлD) и дополнительные хлорофиллы, занимающие промежуточное положение между пигментом реакционного центра и Фео (ВА — на белке D1, Вв — на белке D2, на рисунке не показаны). Кроме белков D1 и D2 в состав ядра ФСII входят белки СР47 и СР43, которые связывают около 30 молекул хлорофилла а и составляют внутреннюю, фокусирующую антенну комплекса, цитохром b559, включающий α- и β-субъединицы, участвующий в циклическом транспорте электронов в ФСII и наряду с белком I (4,8 кДа) необходимый для сборки функционально активного комплекса ФСII. Таким образом, ядро комплекса ФСII, способное окислять воду и восстанавливать пул пластохинонов, составляют белки Dl, D2, СР47, СР43, α- и β-субъединицы цитохрома b559 и белок I (см. рис. 3.34). Оптимизацию работы системы окисления воды обеспечивают 3 гидрофильных белка с молекулярными массами 33, 23 и 17 кДа. Они составляют периферийный домен комплекса ФСII Эта группа белков, называемых белками водоокисляющего комплекса (ВОК), располагается на люменальной стороне мембраны вблизи локализованного на белке D1 марганцевого кластера и играет структурную и регуляторную роль в системе окисления воды. Белок 33 кДа влияет на состояние марганцевого кластера, а два других белка важны для создания в области марганцевого кластера необходимой для окисления воды концентрации ионов кальция и хлора. С комплексом ФСII связаны полипептиды, составляющие внешнюю (дистальную) антенну комплекса. Одни из них (Lhcb 1, 2, 3) образуют мобильную антенну — светособирающий комплекс II (ССКII), другие (Lhcb4-6) представляют собой группу минорных, низкомолекулярных белков (СР29, СР26, СР24), занимающих промежуточное положение между ядром комплекса и ССКП. Белки дистальной антенны присоединяют более 150 молекул хлорофилла а и около 100 молекул хлорофилла b, осуществляющих поглощение и передачу энергии света в реакционные центры ФСII. В дистальную антенну входят также около 50 молекул каротиноидов, функция которых связана не только с поглощением и передачей энергии, но также с защитой комплекса ФСII от избыточной энергии света. Транспорт электронов в ФСII.Первичные фотохимические реакции в РЦ ФСIIзапускают вторичный транспорт электронов по ЭТЦ. Акцепторная сторона ЭТЦ ФСII осуществляет перенос электрона от восстановленного Фео к пулу пластохинонов. Донорная сторона ЭТЦ включает ряд окислительно-восстановительных реакций, приводящих к окислению воды. При этом электроны воды используются для восстановления первичного донора электронов П . Процесс сопровождается выделением молекулярного кислорода и переносом протонов в люменальное пространство. Рассмотрим подробно окислительно-восстановительные процессы, проходящие на донорной и акцепторной сторонах ЭТЦ фотосистемы II. Донорная сторона ЭТЦ ФСII связана с работой системы окисления воды и передачей электронов от воды к П через промежуточный переносчик электронов TyrZ — остаток тирозина белка D1 (Туr-161). Окисление, или фотолиз, воды — уникальное свойство ФСII растений. Процесс окисления воды при фотосинтезе приводит к выделению кислорода без образования промежуточных продуктов окисления и описывается уравнением 2Н2О → О2 + 4Н+ + 4е Механизм окисления воды в настоящее время еще не вполне понятен, но можно считать экспериментально доказанными следующее. Движущей силой окисления воды является образование в ходе первичных фотохимических реакций очень сильного окислителя П . Потенциал П (+1,12 В) достаточно высок,чтобы произвести окисление воды, окислительно-восстановительный потенциал которой около +0,8 В. Однако окисление воды осуществляет не сам окисленный пигмент реакционного центра П , а особая система окисления воды, включающая марганцевый кластер (Mn-кластер). Между Mn-кластером и окисленным П имеется промежуточный переносчик электронов Tyrz — остаток тирозина белка D1 (Туr-161). Одна из современных моделей, описывающих процесс окисления воды в марганцевом кластере, основана на металло-радикалъном механизме, согласно которому существует тесное взаимодействие двух реакций — окисления тирозина и окислительно-восстановительной реакции в марганцевом комплексе. Близость расположения Tyrz к марганцевому кластеру позволяет рассматривать тирозин как компонент водоокисляющей системы ФСII. Последовательность реакций представляется следующим образом. Первым событием, происходящим вслед за первичным разделением заряда в РЦ ФСII, является окисление Tyrz и восстановление П - Окисление тирозина идет с образованием нейтрального радикала (Y ), что указывает на сопряженность процессаотнятия электрона от гидроксила тирозина с процессом передачи его протона на акцептор. В качестве акцептора протона могут выступать остатки гистидина Н190 и глутаминовой кислоты Е189 белка D1, расположенные вблизи тирозина-161 (Y161, YZ). Далее протон может быть передан по цепочке аминокислот к люменальной поверхности мембраны, где происходит либо локальное изменение концентрации протонов, либо выброс протона в люменальное пространство. Восстановление тирозина идет за счет работы марганцевого кластера и окисления воды: образующийся нейтральный радикал Y осуществляет отрыв атомов водорода от субстратной воды, связанной с атомами Мn в кластере. Полное окисление воды и образование кислорода требует четырехкратного повторения описанных событий. Состояние системы окисления воды меняется в зависимости от уровня окисленности атомов марганца в кластере. Представление о существовании отдельных функционально различимых состояний (S-состояний) водоокисляющей системы возникло на основе результатов работ П.Жолио с сотр. (1969). Используя мощные кратковременные вспышки света для индукции выделения кислорода в адаптированных к темноте хлоропластах, исследователи обнаружили осцилляцию выделения кислорода с периодом 4 (рис. 3.35, А). Рис. 3.35. Фотоокисление воды в хлоропластах: А — выделение кислорода хлоропластами в ответ на серию кратковременных вспышек (по Joliot et at., 1969); Б — модель изменения S-состояний системы окисления воды при освещении (по Kok et al., 1970); Б — модель изменений степени окисленности ионов марганца при освещении (по Robblee et al., 2001). Объяснение в тексте
Первые две вспышки не приводили к заметному выделению кислорода. Максимальное количество кислорода выделялось на третью вспышку, второй максимум приходился на четвертую вспышку. После примерно 20 вспышек устанавливалась стационарная величина выделения кислорода. Для объяснения этих результатов была предложена модель работы водоокисляющей системы (В. Кок et al., 1970), согласно которой система окисления воды может находиться в различных состояниях, обозначаемых , S0, S1 S2, S3, S4 (рис. 3.35, Б). Переход из одного состояния в следующее совершается в результате действия вспышки света и удаления электрона из системы. Выделение молекулярного кислорода из двух молекул воды происходит лишь при переходе из состояния S3 в состояние S4, причем состояние S4 нестабильное и сразу же переходит в состояние S0. Согласно современным представлениям, в ходе S-цикла изменяется валентность двух из четырех составляющих кластер атомов Мn. Схема возможного поэтапного изменения валентности марганца представлена на рис. 3.35, В. В результате изменения окислительно-восстановительных свойств кластера достигается высокий положительный окислительно-восстановительный потенциал (E около +0,9 В) и становится возможным окисление воды. Окисление воды сопровождается выделением 4 протонов в люменальное пространство тилакоидов, однако оно не синхронно с выделением кислорода: по одному протону Н+ выделяется при переходе из состояния S0 в S1 и из состояния S1 в S2, два оставшихся протона выделяются после перехода из состояния S3 в состояние So через нестабильное состояние S4. В организации водоокисляющей системы хлоропластов участвуют как минимум 4 атома марганца, связанных с белком D1. Кроме того, для активной работы системы окисления воды требуются ионы хлора и кальция. Одна из моделей пространственной организации Mn-кластера представлена на рис. 3.36.
Рис. 3.36. Схема организации Mn-кластера (по Tommas, Babcock, 2000) Альтернативный путь восстановления П .Вусловиях нарушения донорного участка ЭТЦ фотосистемы II, например при повреждении системы окисления воды, восстановление Пидет за счет альтернативных доноров электронов (см. рис. 3.34). К ним относятся цитохром b559, сопровождающий хлорофилл Xлz, иβ-каротин (Кр). При реализации этого пути транспорта электронов непосредственным донором электронов для окисленного Пявляется β-каро- тин. Его окисление приводит к окислению хлорофилла ХлZ и (или) цитохрома b559. Восстановление этих компонентов может происходить с участием пластохинона ФСII QB. Таким образом, в ФСII возможен циклический транспорт электронов, позволяющий восстановить окисленный Ппри заблокированном потоке электронов от воды. В ФСII обнаружены две формы цитохрома b559: высокопотенциальная (цит. b559H, Е = +0,37 В) и низкопотенциальная (цит. b559L, E = +0,08 В). Высокопотенциальная форма протонирована, низкопотенциальная — депротонирована. При определенных условиях наблюдается взаимопревращение двух форм цитохрома b559, поэтому цитохром b559 может осуществлять не только циклический транспорт электронов, но и трансмембранный транспорт протонов в ФСII в ходе редокс-реакций. Акцепторая сторона ЭТЦ ФСII включает первичный акцептор электронов реакционного центра — феофитин (Фео) и вторичные акцепторы электронов — пластохиноны QA и QB, осуществляющие перенос электронов от Фео на пул пластохинонов (PQ). Пластохиноны А и В составляют так называемый «двухэлектронный затвор» на акцепторной стороне ФСП. Переход от одноэлектронного типа переноса электронов к двухэлектродному на уровне пластохинонов Qa и Qb происходит следующим образом. Одноэлектронное восстановление QA приводит к образованию семихинона, который сейчас же передает электроны на QB. При этом QA окисляется и готов принять следующий электрон от Фео , a QB находится в форме семихинона до следующего акта передачи электронов от QA. Получив от QA второй электрон, QB полностью восстанавливается, используя два Н+ из стромального пространства. В форме пластохинола QBH2 он диссоциирует из комплекса ФСII в гидрофобную фазу мембран и становится компонентом пула пластохинонов. Для передачи электрона от QA к QB необходим ион двухвалентного железа.
|